Stoff	Chlorbenzol
Literaturtitel	The Aquatic Toxicity of Organic Compounds to Embryo-Larval Stages of Fish and Amphibians
Organismus	Ambystoma gracile
Habitat	Wasser
Prüfart	Embryo-Larval-Toxizität
Endpunkt	-
Standard	-
Dauer Parameter Wert Bezug nominal / analytisch 228  h LC1 = 9,7  µg/l Dauer (norm.) Wert (norm.) 9,5  d LC1 = 9,7  µg/l
Testmedium	Süßwasser
pH		Temperatur
Dynamik		Wasserhärte
Methodenlisting
Zusammenfassung ZUR TESTSUBSTANZ Reinheitsgrad: p.a.. Konzentrationsbestimmung im Testmedium mit   GLC bzw. HPLC (bei c > 1 mg/l). Herstellung der Testlösungen und   kontinuierliche Beschickung der Testkammern mit spezieller Durchfluß-   Mischeinheit. Lösungsvermittlung mechanisch; entsprechend   dem Lösungsverhalten durch Magnetrührer oder Hochgeschwindigkeits-   homogenisation. In den Kammern: Testvolumen: 0,5 l, Volumendurchsatz:   200 ml/h, fortlaufende Durchmischung des Mediums mit Magnetrührern,  tägliche Kontrollmessungen.   Getestet wurde eine 6 stufige Konzentrationsreihe plus Kontrolle.   Tatsächliche Applikationskonzentrationen (mg/l): 0,013, 0,044,   0,28, 0,63, 18,4, 34,5 . ZUM TESTORGANISMUS Frisch befruchtete Eier. Alter der Embryonen bei Expositionsbeginn:   max. 30 min. Die Eizellen wurden durch künstliches Herbeiführen der Ovulation   mit Hypophysenextrakt und Humanchoriongonadotropin (HCG) gewonnen.   Herkunft der Elterntiere: Charles Sullivan, Nashville, Tennessee,   USA.  Größe der Expositions-/Kontrollgruppen: 50 - 125 Individuen   je Testkammer. Der Fortgang der Embyonalentwicklung wurde täglich überprüft,   tote Exemplare wurden entfernt. In den Kontrollen nur unregelmäßiges   Auftreten von Defekten; Rate: selten > 1%. ZUM TESTMEDIUM Rekonstituiertes Wasser. Reinheitsgrad verwendeter Salze: p.a.. Alkalinität   des Stammediums (als CaCO3): 65,0 mg/l, Osmolarität (Stammedium):   10,8 mOsm/kg H2O. Bedingungen im Test: Temperatur: 20,2  Grad C, Härte (als CaCO3): 98,8 mg/l, Leitfähigkeit: 153,7 µmhos/cm,   pH: 7,8, O2-Gehalt: 7,5 mg/l. Kontrolle von Temperatur, O2-Gehalt, Härte,   pH-Wert und Leitfähigkeit in regelmäßigen Intervallen. TESTPARAMETER Kriterium für Effekt: Schlupfrate normaler Larven nach ständiger   Exposition während des Embryonalstadiums. Als normal wurden Larven   ohne grobe Defekte bzw. Mißbildungen definiert. Tiere mit   deutlichen Schädigungen wurden aufgrund geringer Überlebenswahrschein-   lichkeit als tot gewertet. Der angegebene Wert basiert auf der   akkumulierte Anzahl geschädigter oder bis zum Hauptschlupftag abgestorbener   Individuen korrigiert um die entstprechenden Daten der   Kontrolle. SONSTIGES Durchflußtest. Zur Testkammer: Zur Minimierung von Substanzverlusten über   Verdunstung wurden verschlossene, vollständig mit Medium gefüllte   Pyrex-Gefäße eingesetzt, die keine freie Gasphase enthielten. Die Kammern   waren mit Edelstahlnetzen horizontal in zwei Kompartimente aufgeteilt   von denen das obere die Embryonen, das untere einen magnetgetriebenen   Rührstab enthielt. Zulauf des Mediums im Rührkompartiment, Ablauf an der   Gefäßdecke.
Memos
Bemerkung	Es wurde die Embryo-Larval-Toxizität von insgesamt 11 Stoffen   gegen 2 Fischarten (S. gairdnerii; Pimephales promelas) und   4 Amphibienarten (Ambystoma gracile; Rana pipiens; Rana temporaria;   Xenopus laevis) nach analogen Verfahren geprüft. Je   Testdurchgang wurden sowohl die LC50-Werte am Hauptschlupftag   als auch am vierten Tag nach dem Hauptschlupftag bei fortgesetzter   Exposition der Larven bestimmt. Bei 9 Stoffe wurden für den verlängerten   Expositionszeitraum zusätzlich LC10- und LC1-Werte ermittelt. Die Angabe der Originalquelle zur Testdauer (5,5 d) wurde in die   Dimension h umgerechnet.
Sonstige Befunde	Mit steigender Konzentration der Testsubstanz wurden sinkende   Larvenschlupfraten bei zunehmender Zahl geschädigter Tiere   festgestellt. Bei Applikationskonzentrationen zwischen 0,63 mg/l   und 18,4 mg/l zeigten die geschlüpften Larven Schädigungen mit einer   Häufigkeit von 7 % bis 27 %. Eine Konzentration von 34,5 mg/l   führte zur kompletten Mortalität (Schlupfrate: 0%).